努比亚黑山羊长途运输应激综合症防治,一例猪

日期:2020-03-12编辑作者:养殖业资讯

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玛纳斯县某羊场于2007年8月从北京引进179头萨福克肉用种羊,其中怀孕母羊127头,一周岁左右。羊到达该场第2d后开始出现急性发病并死亡,经临床、剖解及实验室病原诊断为羊溶血性巴氏杆菌病,现将诊断结果报告如下:

黔西县某饲养场的羊发生一起急性传染病,根据发病情况、临床症状、病理变化及实验室检验等诊断为羊巴氏杆菌病,通过及时对症治疗,取得了满意疗效。现将诊治过程报告如下,供广大养殖户参考。

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郭青春

1、发病情况及临床症状

1发病情况

金 良

湖南省怀化市怀化职业技术学院动物科技系,湖南怀化418000

羊群突然发病,病程短,死亡率高,至前去诊断时已有4头死亡,2头正处于发病中,且病死羊均为怀孕母羊。发病羊食欲禁绝,四肢僵直,无法站立,眼结膜发紫,气喘,体温升高。

该羊场从四川引进205只大耳羊,体重在10~20kg,到场后按常规饲养,未见异常。第4日清晨饲养员发现突然死亡4只,并有20余只羊精神不振,不肯吃草,伴有咳嗽等症状,误以为是长途运输及不能适应新环境等应激因素所致,用头孢类药物盲目治疗多日无效,才来就诊。至15日该批羊共发病43只,发病率20.98%,死亡18只,死亡率8.78%,病死率41.86%。

(辽宁省北镇市广宁动物卫生监督所 121300)

收稿日期:2014-12-15

2、剖检变化

2临床症状

猪巴氏杆菌病又称为猪肺疫、猪出血性败血症,其是由猪巴氏杆菌引起的猪的一种急性传染病或散发性和继发性传染病。此病一年四季均可发生,如果治疗不及时,死亡率很高,会给养猪业带来很大的经济损失。现将一例该病的发生及诊治情况报告如下。

郭青春,男,1982年生,硕士,兽医师。

将频死病羊放血,无菌剖开腹腔及胸腔,发现病羊肝脏肿大,表面有灰白色、针尖大小的坏死灶,脾脏与胆囊正常,肠系膜淋巴结肿大出血;胸腔中积有大量淡黄色浆液,心外膜有出血点,心包积液,肺充血,发紫,有部分坏死灶,气管有大量血样液体,喉头肿大出血;淋巴结点状出血且肿胀多汁;肾脏正常。

羊只突然发病,体温一般为40~42℃,精神沉郁,呆立或卧地不起,食欲较差或不食,反刍停止。病羊体态一般,部分消瘦,被毛脏乱,软弱无力,行走不稳。有的羊可视黏膜发绀,两眼流泪,鼻镜干燥,打喷嚏,鼻腔流出浆液性或脓性鼻液,气喘、呼吸困难。另外,有29只病羊腹泻,粪便中有鲜红色血液,1只病羊尿血。

1 发病情况和临床症状

山羊为草食性反刍动物,采食广、耐粗饲、饲养成本低、繁殖快、肉质营养丰富、经济价值高,特别是近几年山羊价格直线攀升,养羊成了许多返乡创业者的首选项目。然而,这些创业者大多缺乏养殖经验和技术,如何应对山羊引种长途运输应激综合症,成为首要任务。笔者从事牛羊反刍动物临床研究多年,现以邵阳县某羊场新引进努比亚黑山羊发病为例,介绍长途运输应激综合症防治管理经验。

3、实验室诊断

3剖检变化

2014年3月,我市某养猪户饲养的43头63日龄的仔猪发病。病猪开始出现精神沉郁,不愿活动,干性短咳,随着病情的发展,体温升高到41~42℃,出现湿性痛咳,从鼻孔流出浆性或脓性分泌物,可视黏膜充血,皮肤上有红斑,呼吸困难,常呈犬坐姿势,最后病重的因为窒息而死亡。

1 发病情况

3.1病原染色、镜检

对9只病死羊及3只濒死羊进行剖检,发现其病理变化基本相同:皮下有液体浸润和小出血点,咽喉、气管黏膜肿胀发炎,胸腔内积有黄色渗出性浆液;肺充血、瘀血、肿大,颜色暗红,有小出血点和肝变,切面外翻,流出淡粉红色泡沫样液体,肺门淋巴结肿大;心包腔内有黄色浑浊液体,心腔扩张,有的冠状沟处有针尖状出血点,肝脏瘀血,有的有灰白色针头大小坏死灶;胃肠道黏膜弥漫性出血、水肿;其他脏器水肿和瘀血。

2 病理变化

邵阳县某羊场2013 年11 月7 日从山东省济宁地区引进努比亚黑山羊220 多只,经20 多小时长途运输,运回后即按常规放牧饲养。据畜主介绍引种回来第2 天开始出现羊感冒、咳嗽、流鼻液、腹泻等症状,从第3 天开始第1 头羊死亡,随后全群羊发病,畜主用青霉素、链霉素、氧氟沙星等药治疗,并于第6 天全群注射传染性胸膜肺炎,但效果仍然不佳,到第9 天死亡羊达9 只,发病羊另有60多只。应畜主请求,11 月17日到该场诊治。

无菌采取病羊肝脏、脾脏、肺脏、心血和淋巴结抹片,瑞氏染色并镜检,可见大量两极浓染的球杆菌。

4实验室检验

病猪全身黏膜、浆膜和皮下组织有出血点;气管、支气管内有多量泡沫黏液;纤维素性肺炎,肺有不同程度病变区,切面有暗红、灰红、灰白或灰黄等多种色彩,呈大理石样外观;胸膜有纤维素性附着物,与病肺黏连;胸腔及心包积有多量淡红色混浊液;胸部淋巴结肿大或出血。

2 临床症状

3.2病原分离与鉴定

取病羊心血、肝脏、具有典型病变的淋巴结、肠系膜做触片和涂片,分别用瑞氏染色和革兰氏染色。镜检可见卵圆形、两极浓染的小球杆菌,有荚膜,革兰氏染色阴性。

3 实验室诊断

经询问畜主羊群刚引进来时看似正常,经过2~3 d后,食欲下降或不食,测量病羊体温一般达41 ℃,放出去跟不上羊群队伍,精神沉郁,四肢无力,反刍减弱。经过几天时间,部分病羊体态较差,被毛脏乱,行走不稳。少数病羊咳嗽,病初期流清亮的浆液性鼻液,后期可见黏液脓性鼻液。按压左侧瘤胃部,内有食物松软,指压有轻微痕迹,叩诊浊音。

将接种培养24h的鲜血平皿取出,发现平皿内长满了灰白色、圆形、光滑、带荧光、直径2~3mm的小菌落,菌落周围有β-型溶血。挑取单个菌落接种到血斜面上,培养后获得纯培养物。

取病羊肝脏深部组织接种于营养肉汤、血液琼脂培养基、麦康凯琼脂培养基中,37℃培养24h。结果可见血液琼脂平板上长出圆形、隆起、光滑、湿润、边缘整齐无溶血的小菌落;营养肉汤培养基呈轻度浑浊,有沉淀,轻轻震荡呈条絮状上升;麦康凯琼脂培养阴性。菌落及肉汤培养物经涂片镜检,有蓝绿色荧光,均检出两极浓染的革兰氏阴性小球杆菌。

3.1 直接镜检

3 病理剖检

将培养物涂片,革兰氏染色为阴性、无芽孢、有荚膜、两端钝圆的球杆菌;病原菌在普通培养基上生长不良,在麦康凯培养基上生长为红色菌落;培养物做糖发酵实验,能发酵葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、甘露醇等,不能发酵鼠李糖、木糖、乳糖等,靛基质实验、尿素酶实验、吲哚实验为阴性。

将分离菌株划线接种于血红素琼脂薄层板上,37℃培养18h,于45°折射光低倍显微镜下检查,菌落呈蓝绿色带金光的Fg型强毒株。

取病死猪的心血、肺等组织涂片,用姬姆萨氏染色,菌体呈两端钝圆,两极着色浓染的短杆菌;用革兰氏染色,镜检可见明显的革兰氏阴性红色小杆菌。

病羊解剖胸腔有大量淡黄色渗出液,内有几块黄色果冻样透明纤维渗出物;肺部瘀血,颜色暗红、肿胀不明显,左侧肺部心叶与心包部分黏连,掰开见黏连部有黄色豆腐渣渗出物,肺其余部分病变严重,切面流出泡沫样粉红色液体;心脏无明显病理变化。瘤胃内食物充盈,网胃瓣胃亦有食物,皱胃空虚;肝脏、脾脏、肾脏无明显病理变化。

3.3动物实验

将该菌纯培养物接种于生化试验管,37℃培养24h。结果显示,该菌能分解葡萄糖、麦芽糖、果糖、甘露糖、蔗糖及甘露醇,产酸不产气。不分解rǔ糖、鼠李糖、肌醇。可产生过氧化氢酶,能生成硫化氢和靛基质,不液化明胶,M.R试验阴性,V-P试验阴性。

3.2 细菌分离培养

4 实验室检验

取37℃24h肉汤培养物0.4mL,经腹腔注射给小白鼠,发现小白鼠分别在18~24h以内全部死亡。剖解后发现小白鼠肝脏肿大、有针尖大小的坏死灶;肺部出血,发紫;心包积液等与自然发病羊的情况相同。用发病小白鼠肺、肝、心血、脾等涂片,瑞氏染色,镜检见很纯的两极浓染的球杆菌。划血平板培养后生长出灰白色、露滴状、β-型溶血的小菌落,革兰氏染色镜检为阴性、无芽孢、有荚膜、两端钝圆的球杆菌。

取体重15~20g的健康小鼠16只,将分离菌的营养肉汤培养物分别接种小鼠腹腔,0.2mL/只。另设空白对照4只,腹腔注射无菌生理盐水0.2mL/只。经48h观察,试验组小鼠全部死亡,剖检呈典型败血症变化,所分离的菌株同试验菌。对照组小鼠全部健活。

以无菌操作取病死猪肝、脾等组织,分别接种于鲜血琼脂平板培养基、普通琼脂培养基和麦康凯培养基上。经37℃培养24h后观察,在鲜血琼脂平板培养基上,可见长出圆形、淡灰色、湿润、露珠样小菌落,取该菌落涂片、染色、镜检可见革兰氏阴性两极浓染的短小杆菌。在普通琼脂培养基上生长贫瘠,在麦康凯培养基上无任何生长。

4.1 涂片镜检

3.4药敏试验

采用常规药敏试验,对12种抗菌药物进行筛选。结果表明,该菌对氟甲砜霉素、恩诺沙星、硫酸卡那霉素、复方新诺明最敏感;对氨苄青霉素、四环素、氟哌酸较敏感;对环丙沙星、痢菌净、土霉素等有不同程度的抗药性。

3.3 生化试验

取病羊病变肺脏和胸水涂片,革兰氏染色镜检,见红色阴性菌;(www.nczfj.com)瑞氏染色镜检可见大量单个存在的两极浓染,中央部分着色较淡,呈卵圆形的小球杆菌。

将分离纯化的菌株均匀涂布在血平板上,做药敏试验,37℃温箱内培养24h,发现分离的病原菌对庆大霉素、卡那霉素、土霉素、头孢拉定高度敏感;对多粘菌素中度敏感;对青霉素、链霉素、四环素、万古霉素低度敏感。

5羊巴氏杆菌病治疗措施:

分离的细菌能发酵甘露醇、葡萄糖、蔗糖、果糖,产酸不产气,不发酵乳糖、棉子糖、木糖;分离的细菌进行硫化氢和靛基质试验,结果为阳性;V-P试验和M.R试验均为阴性。

4.2 分离培养

据以上特性分析,该羊场发病羊为溶血性巴氏杆菌病所致。

对病死羊消毒、深埋并做无害化处理。加强饲养管理,清除舍内和运动场积粪,对病畜活动的圈舍、场地、接触过的用具以1∶400新申抗毒威喷雾并清洗。对粪尿等排泄物用20%漂白粉彻底消毒。百毒杀溶液以1∶3 000清洁用具和舍内外喷雾消毒,同时加强通风换气。采取上述措施3d后疫情得到控制,未再复发。

3.4 药敏试验

取病羊心脏组织接种于麦康凯琼脂培养基、血液琼脂培养基中,于37 ℃恒温培养箱中培养24 h观察。结果可见在麦康凯琼脂培养基上不生长,而将病料接种在血液琼脂平板上长出灰白色、湿润、露珠状菌落,无溶血;菌落培养物经涂片镜检,检出两极浓染的革兰氏阴性小球杆菌。

4、防治

对健康羊及周边羊群接种。用生理盐水洗掉纯巴氏杆菌菌落,加入肉汤中继续增菌培养24h,加入0.8%甲醛灭活培养12h,再加入铝胶制成简易菌苗,全群紧急接种,皮下注射2mL/只。发生疫情时不得外卖和引进羊只,防止疫情蔓延。

用多种抗菌药敏纸片做药敏试验,结果该菌对丁胺卡那、阿莫西林、氟苯尼考高敏;对庆大霉素、喹诺酮中度敏感;对青霉素、链霉素不敏感。

4.3 药敏试验

4.1隔离病羊,加强畜舍的通风、降温、消毒、饮水等日常管理,适当增加羊群的户外运动,控制日粮中的营养比例。

对病羊采用氟甲砜霉素和硫酸卡那霉素联合用药,配合地塞米松磷酸钠。氟甲砜霉素20mg/kg体重,硫酸卡那霉素1.5万IU/kg体重,地塞米松磷酸钠4mg/只,肌肉注射,1次/d,连用3d。并用复方新诺明拌料,3g/次/只,2次/d,连用5d。同时全群用百毒杀溶液1∶10 000自由饮水。

经临床症状、病理变化,实验室检查,可以确诊该群猪患猪巴氏杆菌病,即猪肺疫。

用常规药敏试验方法,细菌对6 种抗生素抑菌情况如表1。

4.2对羊群饮水投放土霉素和高纯维生素C,增强羊群免疫力。

对食欲废绝、高热不退的重症病羊加用30%安乃近3~5mL肌注,5%糖盐水250~500mL、安钠咖1g、维生素C 5mL混合静滴,同时配合口服补液盐,调节电解质平衡。上述药物在体温、呼吸等生理指征恢复正常后巩固1~2d,防止复发。

4 治疗

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4.3对个别发病羊肌注或静脉注射50g/L葡萄糖盐水250mL,加0.2g磺胺嘧啶钠,0.1g维生素C,一支80万单位的庆大霉素治疗,连用3~5d。

采用上述措施进行治疗,4d后病情得到控制,1周后病羊基本恢复正常。

对发病猪进行隔离,对猪舍的墙壁、地面、饲养管理用具周围环境进行彻底消毒,将垫草烧掉,对病死猪进行深埋或者焚烧。

结果表明该菌对氟苯尼考、替米考星敏感;对氧氟沙星、氨苄西林次敏;青霉素、链霉素反应较弱。

5、讨论

6体会

根据药敏实验结果,选用高敏的丁胺卡那注射液对病猪进行治疗(www.nczfj.com),按照lOmglkg的剂量进行肌肉注射,每天上、下午各1次,连用Sd。在全群饮水中加入电解多维。

5 诊断

5.1溶血性巴氏杆菌是绵羊、山羊和牛肺炎的原发或继发病原菌,还可引起牛羊的急性败血症等,也有感染人的报道。它与多杀性巴氏杆菌在形态上极为相似,在许多糖发酵实验中也有相同特点,但是二者也有明显区别:溶血性巴氏杆菌在鲜血平板琼脂培养基上有明显的溶血现象,能在麦康凯培养基上生长,而多杀性巴氏杆菌则不发生溶血,在麦康凯培养基上也不生长;溶血性巴氏杆菌在靛基质实验中为阴性,而多杀性巴氏杆菌则为阳性。

寒冷、潮湿和刺激性气体以及突变的气候是羊场本次羊巴氏杆菌病发病的诱因。羊巴氏杆菌属条件致病菌,存在于健康羊呼吸道及消化道内,当羊机体抵抗力下降时易受侵染,造成内源性感染并呈散发或地方性流行。羊只发病后畜主未能及时采取隔离、消毒等有效措施,使该病迅速传播,导致全群发病。

经上述方法治疗,3d后回访,没有新发病的猪出现,也没有再出现死亡。此次共发病猪21头,死亡5头。

鉴于新引进羊群的发病情况、临床症状、病理剖检变化及实验室检查结果,初步诊断为因长途运输体弱及水草不适应而引起的巴氏杆菌与前胃弛缓应激综合症。

5.2该羊场暴发的溶血性巴氏杆菌病可能是自身携带,且均发生于怀孕母羊,主要因为经过长途运输和生存环境的变化,羊群免疫力下降,加上本地几天持续高温,造成羊群食欲下降,而这群怀孕母羊又是头胎羊,本就处在各种应激当中,所以造成该群羊溶血性巴氏杆菌的急性发病,造成重大经济损失。因此,以后在引进羊时,一定要严格筛选,注意引进时间和羊群到场后的饲养管理,减少各种应激,避免发生此类情况。

养羊户在冬季尤其要搞好圈舍卫生,及时清除粪尿及污物,保持舍内干燥,经常通风换气,定期消毒,做好保温措施,给羊群提供适宜的生活环境。

5 预防

6 综合控制措施

饲料中增加精料及矿物质、维生素,提高机体抗病能力。有条件的可添加益生素等保健药品,抑制有害菌群,调节肠道微生态平衡,对控制该病的发生效果极佳。

预防本病,必须坚持预防为主的原则,消除或减少降低猪抵抗力的一切不良因素。一是加强饲养管理,做好圈舍内的环境卫生,保持猪舍通风良好、温暖干燥、水源清洁、饲料配合原料多样化,增加多种维生素,增强猪体的抗病力。二是尽量采用全进全出制的生产方式,封闭式管理猪群,减少从外面引猪,以防引进疫病。三是坚持春秋两季定期进行预防注射,采用口服肺疫弱毒冻干菌苗,按瓶签说明的头份,用水稀释后,混入饲料或水中喂猪,一定要确保每头猪都接受免疫。接种疫苗前几天和后7天禁用抗生素药物。

1)隔离病羊。对羊群进行清理,凡出现咳嗽、体温升高、不食、反刍问题的视为病羊,挑选出来隔离治疗。

做好免疫工作。由于巴氏杆菌血清型较多,不同型间多不发生交叉免疫,市售疫苗免疫效果不理想。因此,建议在预防时采取本场发生疫病分离的菌种制成简易苗,针对性更强,效果更明显。

6 讨论

2)药物治疗。病羊用30%氟苯尼考配柴胡注射液肌肉注射,直到病羊体温恢复正常。同时用中药麻杏石甘散、替米考星预混剂和健胃散拌料,每日饲喂1次,连用1周。

猪巴氏杆菌病常发生于育成猪和仔猪中,而且在秋末春初及气候骤变季节发生最多。当猪进行长途运输或者饲料管理不当,卫生条件差及环境突变等都可以使猪发生应激,而引起发病。此次该群猪发病正是冬春交替,气温变化大,而引起发病。通过与畜主了解,使用猪肺疫疫苗时,将疫苗直接投入到饲料中饲喂,有可能没有拌均匀,使免疫不确实。

3)羊群保健措施。提高羊群整体营养水平,补充复合维生素、矿物质配合健胃,并将黄芪多糖溶于温水供给羊群以增加体质。

经采取上述综合治疗措施,1 周后除1 只病羊治疗无效死亡外,其余病羊全部康复。

7 结论

1) 引种前必须了解当地羊只的健康及疫病流行情况(包括注射了哪几种疫苗),坚持搞好引种检疫,防止外疫传入。引种尽可能就近原则和不到高风险的省份,避免长途运输导致羊群严重应激。运输要用有隔离栏的专用车辆,装载羊只不宜拥挤。

运输种羊只用秸秆或优质干草喂3 成饱,途中忌给料和饮水。山羊引种应尽量安排在春、秋比较温和的季节。在调种和运输途中应注意防寒、保温及防暑、降温,以减少应激综合症的诱发因素。

2)巴氏杆菌在自然界分布很广,健康山羊的呼吸道也能带菌,作为条件性病原菌寄生,只要羊只体质下降,则容易引发本病。运输、突变的气候、保温太差、饲养管理不善、病弱羊护理不周、隔离不及时是羊场本次发病的诱因,而断断续续的治疗,用药不当是造成该病死亡率高的主要原因。

3)山羊从外地引进时,要携带好一定量原场内的饲料用于到新场地过渡用;羊群到达目的地后休息1~2 h,首先供给少量添加了电解多维、黄芪多糖的饮用温水;其次尽量不改变刚调运前后的羊群饲草、饲料品种、饲养方式,做到逐渐转换并注意质量,调运当天可供应少量原场带过来的优质干草,提高羊的成活率;最后在补充的精料中加入中药健胃散,尽量缓解应激综合症。

4)发现病羊及时隔离。对病羊要早发现、早诊断、早治疗。保持栏舍内的干燥,经常通风换气,定期消毒,做好保温措施,对病死羊要焚烧或深埋。

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